東北大学大学院医学系研究科附属動物実験施設 - 投与・採血の手引き
2000年2月にEFPIA（欧州連邦製薬工業協会）、 ECVAM（欧州代替法バリデーションセンター）の主導により作成され、2002年7月に中井伸子氏により翻訳された「実験動物の被験物質の投与（投与経路、投与容量）及び採血に関する手引き」を以下に掲載します（旧ウェブサイトより移植）。 発表から20年以上が経過していることから、本記事を参照または引用する際には、最新の文献に基づく知見を併用することを推奨します。 翻訳元論文 Diehl, K.-H., Hull, R., Morton, D., Pfister, R., Rabemampianina, Y., Smith, D., Vidal, J.-M. and Vorstenbosch, C.V.D. (2001), A good practice guide to the administration of substances and
euthan
Euthanasia（安楽死）とはギリシャ語のeu（good、よい）とthanatos（death、死）から由来しており、苦痛なく生を終わらせることである。苦痛のない死の条件とは急速な意識の消失後に心臓の停止、呼吸器の停止を起こすこてである。別の条件としては、感情を持っている実験動物を殺すときに、実施者が不快感をもたない方法であり、死後に採取する組織やサンプルに変性がない方法である。各動物種に対して用いられる安楽死法には種々のものがあり、それぞれに長所と短所がある。そのため実験の種類により最も適切な方法を選択すべきである。以下に示す安楽死法はシカゴ大学の動物実験委員会とAmerican Veterinary Medical Assocuation（AVMA）の安楽死に関する委員会が推奨する方法である。これ以外の方法を用いることも可能である。"1993 Report of the AVMA
ラットの採血、どうやってますか？ - ラットの血中コルチゾル濃度を測るために、エーテル麻酔下で腋下の動脈を切って血液を回収してい... - Yahoo!知恵袋
採血の目的によってずいぶん違うので一概に言えません。 １）採血するラットの大きさは？ ２）必要な血液の量は？ ３）静脈血と動脈血を区別する必要はあるのか？ ４）同一のラットを反復利用するのか？ （繰り返し実験に用いるのか？） などによって、とりうる採血手法は大きく異なります。 「エーテル麻酔下で腋下の動脈を切って血液を回収」という手技を選択していることから ラットは、ある程度の大きさがあるのものを、１回の実験で使い切りではないかと類推します。 もし、この条件から外れるとしたら、「腋下の動脈を切って血液を回収」という手技そのものの選択に 誤りがあります。 もし、ラットを１回の実験で犠牲にしてよいのであれば、心臓採血が一番確実で容易な手法です。 また、腋下の動脈よりは、下大動脈のほうがアプローチが容易です。 詳しくは実験動物に関する技術集をごらん下さい。（大学の図書館であれば適切な本が、数冊は
マウス＆ラットの血液検査結果について - Connecting the Dots：楽天ブログ
2011.02.09 マウス＆ラットの血液検査結果について (4) カテゴリ：実験・研究 種々の動物実験教科書を読んでいますが、その採血の方法や注射法・手術法などについて詳しく書かれている作品は多いですが、意外に少ないのが血液検査データの正常値。 少なくとも私の手元にあるそれ系の教科書3冊にはどこにも書かれておりません。 で、ネットを調べれば分かるだろうと思い、軽く調べてみるのですが、獣医さんが開設しているWebなどでイヌ・ネコについては詳細なデータを開示しているも、いざネズミ系となるとほんと皆無ですね。 それでもしつこく調べたり、周囲の人にヒントをもらいながら、ようやく調べつきました。 ”日本チャールズリバー”のwebsiteです。 http://www.crj.co.jp/randd/research.cgi 見てみると、ラットについては6種のストレイン、マウスについては15種ものスト
1
リリース、障害情報などのサービスのお知らせ
最新の人気エントリーの配信
j次のブックマーク
k前のブックマーク
lあとで読む
eコメント一覧を開く
oページを開く
日本クレア株式会社
BioTechnicalフォーラム